VERSIÓN PARA PROFESIONALES

Gusano barrenador del Nuevo Mundo

PorSonja L Swiger, PhD, MS, BS, Texas A&M AgriLife Extension
Revisado/Modificado Modificado sept 2025
v103236908_es

Distribución geográfica y reciente reaparición del gusano barrenador

Cochliomyia hominivorax, conocido como el gusano barrenador del Nuevo Mundo (NWS), es una amenaza importante debido a su resurgimiento en 2025 y en años anteriores. Después de décadas de erradicación exitosa en EE. UU. y México, se han documentado nuevos brotes en Panamá (2022), Costa Rica (2023) y México (2024-2025). Los modelos bioclimáticos señalan un alto potencial de invasión en el sur de EE. UU., especialmente en Texas y Florida. El impacto del mortal NWS en la salud animal ha demostrado ser devastador. Solo en Panamá, en 2023, las detecciones de NWS pasaron de aproximadamente 25 casos anuales a más de 6500 en ese mismo año. En EE. UU., en 1976, antes de la erradicación del NWS, se registraron 1 488 256 vacas y 332 600 ovejas y cabras infestadas en Texas.

Los puntos críticos de dispersión en México son Chiapas, Campeche, Tabasco y Veracruz, y las regiones de alta densidad ganadera y de vida silvestre están en mayor riesgo. La especie es endémica en toda América del Sur y el Caribe, y los estudios genéticos revelan una mayor diversidad en Trinidad y Tobago, así como evidencia de un flujo genético continuo entre las poblaciones del Caribe y Sudamérica.

Los climas favorables, el aumento de las densidades de ganado y vida silvestre, y la falta de conciencia entre las poblaciones humanas probablemente facilitarán una mayor expansión hacia el norte y aumentarán la frecuencia y gravedad de los brotes en áreas donde el gusano barrenador del Nuevo Mundo fue erradicado anteriormente.

Los modelos bioclimáticos predicen la reaparición del NWS en hábitats adecuados en el sur de Estados Unidos, así como el establecimiento de este parásito en nuevas regiones geográficas debido al aumento de la temperatura global. La reciente disponibilidad de un genoma de referencia a escala cromosómica respalda la investigación en curso sobre la biología y el control de este parásito.

El impacto económico de la miasis es importante; las pérdidas anuales se estiman en 3600 millones de dólares en América del Sur como resultado de la enfermedad en el ganado, la muerte y la disminución de la productividad.

Ciclo de vida y biología del gusano barrenador

Las hembras adultas ponen entre 200 y 400 huevos en los bordes de las heridas; las larvas eclosionan en un plazo de 10 a 21 horas, se alimentan de tejido vivo durante 5 a 7 días y luego pupan en el suelo. El ciclo de vida puede completarse en tan solo 21 días en climas cálidos.

La presencia de larvas alimentándose atrae a otras hembras a poner sus huevos, lo que provoca infestaciones adicionales. Las infestaciones de larvas no tratadas provocan la muerte del animal infestado en un plazo de 7 a 14 días. Los animales neonatos corren un gran riesgo y, si no se impide la puesta de huevos, siempre se produce la muerte.

Patología y potencial zoonótico del gusano barrenador

La miasis causada por C. hominivorax es una zoonosis que afecta al ganado, la vida silvestre, los perros y otras mascotas, y, en raras ocasiones, a las aves y a los seres humanos. Las larvas de esta mosca parásita se alimentan de la carne de las heridas de cualquier animal de sangre caliente, pero prefieren los mamíferos más grandes a las aves y los humanos, así como las mucosas con pequeñas heridas. La propagación del NWS es el resultado directo del movimiento de animales, tanto legal como ilegal, así como de la infestación de las poblaciones locales de vida silvestre.

Los casos humanos de NWS se informan dondequiera que exista el parásito. Ocasionalmente, se reportan casos humanos en los EE. UU., en personas que han regresado de un viaje a áreas infestadas por el NWS.

Diagnóstico y vigilancia del gusano barrenador

El diagnóstico de la miasis por NWS se basa en la identificación morfológica de las larvas, caracterizadas por sus tubos traqueales pigmentados y espinas segmentarias distintivas. Las larvas sospechosas de NWS se deben recolectar y colocar en un recipiente hermético con etanol al 70 % (suficiente para sumergirlas por completo y matarlas). Como alternativa, se puede utilizar una concentración de isopropanol superior al 70 %. Las muestras se deben enviar a la agencia estatal de salud animal o, si proceden de un ser humano, a los Centros para el Control y la Prevención de Enfermedades (CDC) para su análisis. La identificación de larvas se realiza con mayor frecuencia mediante taxonomía visual; sin embargo, los avances en epidemiología molecular también permiten determinar rápidamente los orígenes de los brotes, utilizando paneles de polimorfismo de un solo nucleótido (SNP) y bases de datos genéticos, lo cual es fundamental para la vigilancia y el control.

Las trampas basadas en olores son el pilar de la vigilancia; y la investigación de objetivos moleculares para mejorar la especificidad y la sensibilidad de los atrayentes está en curso.

Tratamiento y control del gusano barrenador

Las infestaciones del gusano barrenador deben notificarse a las autoridades veterinarias, y una respuesta rápida es esencial para evitar su propagación. Las sospechas de casos en animales o en seres humanos se deben notificar a los departamentos y a los cargos públicos estatales de sanidad animal, así como al Animal and Plant Health Inspection Service (Servicio de Inspección de Sanidad Animal y Vegetal. APHIS). Es posible comunicarse con los CDC en dpdx@cdc.gov para consultas sobre pruebas de laboratorio e instrucciones sobre el telediagnóstico y el envío de muestras físicas. Las consultas clínicas se pueden dirigir a parasites@cdc.gov.

El tratamiento del ganado se limita al cuidado de las heridas (eliminación de larvas, desbridamiento, prevención de la reinfestación). Actualmente, hay tres aerosoles tópicos de piretroides entre cuyas indicaciones figura su uso contra las larvas del gusano barrenador, pero solo deben usarse cuando hay larvas presentes y no como preventivo.

Las opciones de tratamiento en perros incluyen una dosis oral única de nitenpiram (1,43-4,42 mg/kg), que induce la expulsión larvaria rápida en un plazo máximo de 6 horas, o de lotilaner (mínimo 20,5 mg/kg), que logra una eficacia del 100 % en un plazo máximo de 24 horas. 

El espinosad/milbemicina oral también es muy eficaz; estos fármacos tienen actividad sinérgica en la expulsión de larvas del gusano barrenador. El afoxolaner y la milbemicina orales son eficaces, pero actúan más lentamente. El lindano y el fenclofós tópicos, que antes se usaban en apósitos para heridas, ahora están menos disponibles o están restringidos debido a preocupaciones regulatorias. El coumafós sigue en uso en algunas regiones, generalmente como una formulación tópica.

Reconocer y notificar las sospechas de infestaciones es crucial para mantener la erradicación del NWS. El contenido del módulo de capacitación del USDA-APHIS sobre NWS incluye lo siguiente:

  • Las larvas del NWS se pueden encontrar en las profundidades de las heridas.

  • No se recomienda el diagnóstico de campo del gusano; el enfoque debe centrarse en las características de la infestación por NWS.

  • Los casos sospechosos se deben reportar de inmediato al Oficial Estatal de Salud Animal y al Oficial Veterinario del USDA. 

  • Se debe alertar tanto a los veterinarios locales como a los estatales si se sospecha de una infección.

  • Las muestras se deben obtener y enviar mediante el siguiente procedimiento: Recolectar gusanos de todas las áreas de la herida, incluidas las partes más profundas, y conservar las muestras en alcohol (etanol o isopropanol), no en formol.

La técnica del insecto estéril (SIT) consiste en criar grandes cantidades de moscas del NWS y esterilizar las pupas con radiación gamma antes de liberarlas en masa, para permitir que las moscas macho se apareen con las hembras silvestres. Este programa es la piedra angular de la erradicación en toda el área, la respuesta al brote y la única manera de lograr la erradicación del gusano barrenador del Nuevo Mundo. El éxito de este programa se debe únicamente a que las moscas hembra se aparean solo una vez en su vida. El apareamiento de hembras silvestres con machos estériles previene el desarrollo de futuras larvas, ya que los huevos no serán viables.

Amenazas del gusano barrenador a la seguridad alimentaria y salud pública

C. hominivorax representa una amenaza importante para el suministro y la seguridad de los alimentos debido a las pérdidas directas de ganado, la disminución de la productividad animal y la posible contaminación de productos animales, lo que reduce el suministro de carne y otros bienes derivados de los animales para los consumidores. El riesgo de introducción en nuevas zonas se ve acentuado por el transporte mundial y el cambio climático, con consecuencias tanto para la salud animal como para la humana.

Áreas para futuras investigaciones sobre el gusano barrenador

Se necesitan estudios adicionales para aclarar la dinámica de transmisión zoonótica del NWS, cuantificar los impactos sobre la inocuidad de los alimentos, evaluar las técnicas de esterilización y revisar la situación reglamentaria y los perfiles de seguridad de los insecticidas más antiguos utilizados en diferentes países.

Referencias

  1. USDA. New World Screwworm Outbreak in Central America and Mexico. USDA APHIS. Updated September 5, 2025. Consultado el 10 de septiembre de 2025. https://www.aphis.usda.gov/livestock-poultry-disease/cattle/ticks/screwworm/outbreak-central-america

  2. USDA. Historical Economic Impact Estimates of New World Screwworm in the United States. USDA APHIS. January 2025. Consultado el 10 de septiembre de 2025. https://www.aphis.usda.gov/sites/default/files/nws-historical-economic-impact.pdf

  3. Valdez-Espinoza UM, Fadda LA, Marques R, et al. The reemergence of the New World screwworm and its potential distribution in North America. Sci Rep. 2025;15(1):23819. doi:10.1038/s41598-025-04804-9

  4. Venegas-Montero DP, Alfaro-Vellanero MJ, Rojas-Araya D, et al. Case report: re-emergence of Cochliomyia hominivorax in Costa Rica: report of a human myiasis case 23 years after elimination. Am J Trop Med Hyg. 2024;111(5):1020-1023. doi:10.4269/ajtmh.24-0342

  5. Tietjen M, Pfeiffer V, Poh KC. Insights into the genetic landscape and presence of Cochliomyia hominivorax in the Caribbean. Parasitol Res. 2023;122(2):547-556. doi:10.1007/s00436-022-07757-4

  6. Tietjen M, Pérez de León AA, Sagel A, et al. Geographic population genetic structure of the New World screwworm, Cochliomyia hominivorax (Diptera: Calliphoridae), utilizando SNPs. J Med Entomol. 2022;59(3):874-882. doi:10.1093/jme/tjac024

  7. Gutierrez AP, Ponti L, Arias PA. Deconstructing the eradication of New World screwworm in North America: retrospective analysis and climate warming effects. Med Vet Entomol. 2019;33(2):282-295. doi:10.1111/mve.12362

  8. Mulieri PR, Patitucci LD. Using ecological niche models to describe the geographical distribution of the myiasis-causing Cochliomyia hominivorax (Diptera: Calliphoridae) in southern South America. Parasitol Res. 2019;118(4):1077-1086. doi:10.1007/s00436-019-06267-0

  9. Hall MJ, Wall RL, Stevens JR. Traumatic myiasis: a neglected disease in a changing world. Annu Rev Entomol. 2016;61:159-176. doi:10.1146/annurev-ento-010715-023655

  10. Tandonnet S, Krsticevic F, Basika T, et al. A chromosomal-scale reference genome of the New World screwworm, Cochliomyia hominivorax. DNA Res. 2023;30(1):dsac042. doi:10.1093/dnares/dsac042

  11. Calvopina M, Ortiz-Prado E, Castañeda B, et al. Human myiasis in Ecuador. PLoS Negl Trop Dis. 2020;14(2):e0007858. doi:10.1371/journal.pntd.0007858

  12. Tietjen M, Arp AP, Lohmeyer KH. Development of a diagnostic single nucleotide polymorphism (SNP) panel for identifying geographic origins of Cochliomyia hominivorax, the New World screwworm. Vet Parasitol. 2023;315:109884. doi:10.1016/j.vetpar.2023.109884

  13. Dupuis JR, Guerrero FD, Skoda SR, et al. Molecular characterization of the 2016 New World screwworm (Diptera: Calliphoridae) outbreak in the Florida Keys. J Med Entomol. 2018;55(4):938-946. doi:10.1093/jme/tjy078

  14. Hickner PV, Mittapalli O, Subramoniam A, et al. Physiological and molecular correlates of the screwworm fly attraction to wound and animal odors. Sci Rep. 2020;10(1):20771. doi:10.1038/s41598-020-77541-w

  15. Han HS, Chen C, Schievano C, Noli C. The comparative efficacy of afoxolaner, spinosad, milbemycin, spinosad plus milbemycin, and nitenpyram for the treatment of canine cutaneous myiasis. Vet Dermatol. 2018;29(4):312-e109. doi:10.1111/vde.12548

  16. Correia TR, Scott FB, Verocai GG, et al. Larvicidal efficacy of nitenpyram on the treatment of myiasis caused by Cochliomyia hominivorax (Diptera: Calliphoridae) in dogs. Vet Parasitol. 2010;173(1-2):169-172. doi:10.1016/j.vetpar.2010.06.019

  17. do Vale TL, Costa AR, Miranda LM, et al. Efficacy of lotilaner against myiasis caused by Cochliomyia hominivorax (Diptera: Calliphoridae) in naturally infested dogs. Parasit Vectors. 2023;16(1):86. doi:10.1186/s13071-023-05661-z